MODELOS
EXPERIMENTALES “IN VITRO” E “IN VIVO” APLICADOS A
Total de créditos ECTS: 3
Tipo de asignatura: Obligatoria.
Coordinador:
Profesores
Colaboradores:
1.- Francisco
Javier Alcaín Tejada, Profesor Titular del Departamento
de Biología Celular, Fisiología e Inmunología (Sección Biología
Celular) (Universidad de Córdoba). Créditos: 0,6.
2.- María
Isabel Burón Romero, Profesora Titular del Departamento
de Biología Celular, Fisiología e Inmunología (Sección Biología
Celular) (Universidad de Córdoba). Créditos: 0,6.
3.- Socorro
García Navarro. Profesora Titular del Departamento de Biología Celular,
Fisiología e Inmunología (Sección Biología Celular) (Universidad de Córdoba). Miembro del Comité
de Bioética de
4.- José
Antonio González Reyes. Profesor Titular del Departamento de Biología
Celular, Fisiología e Inmunología (Sección Biología Celular) (Universidad de Córdoba). Créditos: 0,6.
COMPETENCIAS U
OBJETIVOS DEL APRENDIZAJE
Esta asignatura cubrirá las siguientes competencias:
1.- Específicas del Master:
2.- Genéricas o transversales: 2A;
3.- Competencias
nucleares: 3A; 3B;
4.- Competencias específicas de la propia asignatura: Se
incluyen a continuación:
COMPETENCIAS
ESPECÍFICAS DE LA ASIGNATURA
|
1- Conocimientos
(Saber) |
1- Habilidades
(Saber hacer) |
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Conocerlas las especies animales utilizadas
para experimentación, y como modelos en nutrición. |
Realizar diseños experimentales para investigación básica en
nutrición |
|
Conocer la normativa vigente
sobre la utilización de animales con fines de experimentación |
Elaborar una dieta experimental |
|
Conocer las principales técnicas
de fraccionamiento celular y la metodología básica para el análisis
bioquímico y estructural de las muestras biológicas de origen animal. |
Adquirir destreza en el manejo de
animales de experimentación y en la toma de muestras |
|
Conocer las técnicas de cultivos
celulares y la potencialidad de uso de los modelos celulares en la investigación en nutrición |
Aplicar las técnicas de
homogeneización tisular y centrifugación para la obtención de fracciones
enriquecidas en mitocondria de hígado de rata. |
|
Conocer la importancia de la
bioenergética mitocondrial en la regulación del
metabolismo celular |
Aplicar la metodología básica
para la utilización de las muestras animales para su análisis bioquímico,
estructural y ultraestructural. |
|
|
Adquirir experiencia en el manejo
de las lineas celulares. Capacitar al alumno para
el diseño de la infraestructura, la metodología y los recursos que se
necesitan en la investigación basada en cultivos celulares. |
|
|
Realización de un cultivo
primario |
METODOLOGÍA DOCENTE
Este curso se desarrollará a través de las actividades lectivas, prácticas y de
evaluación, operando ya sea en grupos plenarios, en subgrupos o individualmente.
Para ello se utilizarán el aula de teoría, el laboratorio y el aula virtual. En
estos escenarios, se utilizarán como herramientas educativas:
a.-Unidades de estudio independiente, es decir, formas de estrategia y
organización del estudio autónomas, propias de cada alumno o grupo de alumnos,
para el tratamiento de un tema encomendado.
b.-La participación en las actividades comunes, como espacio de reflexión,
producción y puesta a prueba colectiva e individual de resultados parciales o
finales de los ejercicios propuestos. Estas actividades incluirán asimismo
prácticas de laboratorio y visitas a Servicios de la Universidad de Córdoba.
c.-Lecturas dirigidas, bajo la forma de documentos propios y artículos
científicos, orientados sobre la base del contenido del curso, proporcionados
por el docente.
d.-Sesiones de tutoría y orientación individual.
e.- Docencia virtual mediante la utilización de recursos on-line y de la
información contenida en un CD con la totalidad de los contenidos del curso.
DISTRIBUCION DE
LOS CRÉDITOS ECTS: 3 créditos = 75 horas de trabajo del alumno.
A.- ACTIVIDADES
PRESENCIALES: 26 horas (35% de las horas totales)
I.- Clases teóricas (total 7 horas):
1.- Animales de experimentación. Características. Normativa
legal aplicable a la utilización de animales con fines de experimentación.
Operaciones básicas en el animalario. Anestesia y sacrificio. Eliminación de
los restos.
2.- Diseños experimentales con animales para investigación
en nutrición. Dietas experimentales.
3.- Modelos animales y nutrición. Aplicación de los modelos
genéticos a la investigación en nutrición. Transgénicos.
4.- Toma de muestras y sus aplicaciones. Análisis mediante microscopía óptica y electrónica. Fraccionamiento celular.
Análisis bioquímico y determinación de actividades enzimáticas.
Conservación de las muestras.
5.- El laboratorio de cultivos celulares. Equipamiento
básico. Medios de cultivo. Procedimientos de esterilización. Conservación de
las células.
6.- Cultivos celulares. Cultivo de órganos. Cultivos
primarios. Técnicas de dispersión celular. Métodos físicos de separación
celular. Líneas celulares. Mantenimiento de los cultivos en el laboratorio.
7.- Modelos in vitro. Características de las líneas celulares más
utilizadas en la investigación sobre nutrición.
II.- Actividades prácticas: 19 horas
1.- El animalario. Visita al animalario del Campus de
Rabanales de
2.- Toma de muestras de animales de experimentación y su
utilización. Procesamiento de los tejidos para microscopía
óptica y electrónica. Fraccionamiento celular. Obtención de fracciones mitocondriales de hígado de rata: 7 horas.
3.- Preparación de medios y material para cultivos
celulares. Trabajo en condiciones de esterilidad. Test
de viabilidad celular. Conservación de líneas celulares. Congelación y
descongelación: 3 horas.
4.- Realización de un cultivo primario de hemisferios cerebrales.
Revestimiento de las placas de cultivo con polímeros sintéticos. Mantenimiento
del cultivo primario y subcultivo: 4 horas.
5.- Modelos in vitro para la investigación en nutrición. Cultivo
primario de hepatocitos de rata. Efecto de la concentración de glucosa sobre la
fisiología mitocondrial. Especies reactivas y
potencial mitocondrial. 4 horas.
B.- OTRAS
ACTIVIDADES: 49 horas (65% del total).
I.- Tutorias: 4 horas
Orientación, seguimiento del aprendizaje del alumno y
resolución de dudas.
II.- Examen: 2 horas
III.- Actividades académicamente dirigidas: 12 horas de
trabajo no presencial del alumno.
1.- Enseñanza para el autoaprendizaje y uso del inglés: 12
horas
Realización de dos trabajos, uno sobre la normativa vigente
para el uso de los animales con fines de experimentación, y otro sobre la
utilización de modelos animales o celulares para investigación básica sobre
nutrición, basado éste último sobre nuevos conocimientos aparecidos en una
revista internacional de prestigio sobre nutrición. Se presentarán en sendos
trabajos de 2 folios.
IV.-Horas dedicadas al estudio y realización de memorias
de prácticas: 23 horas:
1.- Teoría y preparación del examen 20 horas
2.- Memorias de Prácticas 11 horas
Tabla 1: Resumen de distribución de horas por las
distintas actividades.
|
Distribución
horas en créditos ECTS (1 crédito = 25 horas). |
Horas Presenciales (Teoría y Práctica) |
Otras= tutorías, exámenes, horas
no presenciales de estudio, actividades dirigidas,
aula virtual. |
Total horas |
|
Clases teóricas |
7 |
|
7 |
|
Prácticas
|
19 |
|
19 |
|
Tutorías
|
|
4 |
4 |
|
Examen |
|
2 |
2 |
|
Actividades
dirigidas y aula virtual |
|
12 |
12 |
|
Horas
estudio de teoría y preparación del examen |
|
20 |
20 |
|
Memorias
de prácticas |
|
11 |
11 |
|
TOTAL |
26 |
49 |
75 |
CRITERIOS Y
METODOS DE EVALUACION
1.- Criterios cualitativos de evaluación:
Nivel de aprendizaje alcanzado
Capacidad para resolver problemas de forma autónoma
Capacidad para mantenerse informado de modo personal
Capacidad para integrar sus conocimientos y expresarlos de
forma oral y escrita
Sentido crítico y capacidad de generar ideas
Habilidad técnica
2.- Métodos de evaluación:
Examen de test de elección
múltiple, para explorar conceptos teóricos.
Prueba escrita sobre 3 supuestos prácticos para la
resolución de problemas.
Evaluación continuada en las prácticas del aula y el
laboratorio.
Calidad del trabajo personal realizado en el aula virtual
Calidad del trabajo personal de actualización.
Participación en las tutorías.
3.- Criterios cuantitativos de evaluación:
Cumplimiento de las horas presenciales:
1 punto.
Examen de test: 3 puntos.
Evaluación continuada en las prácticas y memorias de
prácticas: 3 puntos
Calidad de los trabajos de actualización: 2 puntos.
Participación en tutorías: 1 punto
RECURSOS PARA
EL APRENDIZAJE
1.- Comunes al resto de las asignaturas
2.- Específicos: Equipos de centrifugación y ultracentrifugación, Animalario, Laboratorio de cultivos
celulares, Citómetro de flujo, Laboratorio para determinaciones
bioquímicas.
IDIOMA EN EL
QUE SE IMPARTE
Español, con actividades complementarias en inglés (bibliografía, realización de un trabajo dirigido).
BIBLIOGRAFIA
- Normativa sobre la utilización de animales con fines de experimentación: Real Decreto 1201-2005; Normativas de bienestar animal en Comunidades Autónomas; Recomendaciones de la European Science Foundation.
- M.A. Hayat (2002) Microscopy, Immunohistochemistry, and Antigen Retrieval Methods: For Light and Electron Microscopy. New York : Kluwer Academic/Plenum.
- J. Celis, N. Carter, K. Simons, J. Small, T. Hunter, D. Shotton (2006) Cell Biology, Four-Volume Set, 1-4, Elsevier.